酶標記抗體(結合物)的制備方法

     結合物即酶標記的抗體（或抗原），是ELISA中最關鍵的試劑。良好的結合物應該是 既保有酶的催化活性，也保持了抗體（或抗原）的免疫活性。酶標記抗體的制備方法主要有兩種，即戊2醛交聯法和過碘酸鹽氧化法。
1、戊2醛交聯法：戊2醛是一種雙功能團試劑，它可以使酶與蛋白質的氨基通過它而聯結。堿性磷酸一般用此法進行標記。交聯方法一步法、兩步法兩種。在一步法中戊2醛直接加入酶與抗體的混合物中，反應后即得酶標記抗體。
ELISA中常用的酶一般都用此法交聯。它具有操作簡便、有效（結合率達60%-70%）和重復性好等優點。缺點是交聯反應是隨機的，酶與抗體交聯時分 子間的比例不嚴格，結合物的大小也不均一，酶與酶，抗體與抗體之間也有可能交聯，影響效果。諏講椒ㄖ校?br> 先將酶與戊2醛作用，透析除去多余 的戊2醛后，再與抗體作用而形成酶標抗體。也可先將抗體與戊2醛作用，再與酶聯結。兩步法的產物中絕大部分的酶與蛋白質是以1:1的比例結合的，較一步法 的酶結合物更有助于本底的改善以提高敏感度，但其偶聯的有效率較一步法低。
2、過dian酸鹽氧化法：本法只適用于含糖量較高的酶。辣根過氧化物 酶的標記常用此法。反應時，過dian酸鈉將HRP分子表面的多糖氧化為醛基很活潑，可與蛋白質上的氨基形成Schiff氏堿而結合。酶標記物按克分子比例聯 結，其最佳比例為：酶/抗體=1-2/1。此法簡便有效，一般認為是HRP最可取的標記方法，但也有人認為所有試劑較為強烈，各批實驗結果不易重演。 
按以上方法制備的酶結合物一般都混有未結合物的酶和抗體。理論上，結合物中混有的游離酶一般不影響ELISA中最后的酶活性測定，因經過底洗滌，游離 酶可被除去，并不影響最終的顯色。但游離的抗體則不同，它會與酶標抗體競爭相應的固相抗原，從而減少了結合到固相上的酶標抗體的量。因此制備的酶結合物應 予純化，去除游離的酶和抗體后用于檢測，效果更好。純化的方法很多，分離大分子化合物的方法均可應用。硫酸銨鹽析法最為簡便，但效果并不理想，因為此法只 能去除留在上清中的游離酶，但相當數量的游離抗體仍與酶結合物一起沉淀而不能分開。用離子交換層析或分子篩分離更為可取，高效液相層析法可將制備的結合物 清晰地分成三個部分：游離酶、游離抗體和純結合物而取得最佳的分離效果，但費用較貴。
結合物制得后，在用作ELISA試劑前尚需確定其適當的 工作濃度。使用過濃的結合物，既不經濟，又可使本底增高；結合物的濃度過低，則又影響檢測的敏感性。所以必須對結合物的濃度予以選擇。最適的工作濃度就是 指結合物稀釋至這一濃度時，能維護一個低的本底，并獲得測定的最佳靈敏度，達到最合適的測定條件和測定費用的節省。就酶標抗體本身而言，它的有效工作濃度 是指與其相應抗原包被的載體作試驗時，能得到陽性反應的最高稀釋度。例如某一HRP：抗人IgG制劑標明的工作濃度為1:5000，表示該制劑經 1:5000稀釋后，在與人IgG包被的固相作ELISA試驗時，將發生陽性反應。但在用于具體的ELISA檢測中，酶標抗體的最適工作濃度受到固相載體 的性質、包被抗原或抗體的純度以及整個檢測系統如標本、反應溫度和時間等的影響，因此必須在實際測定條件下進行"滴配"選擇能達到高敏感度的最大稀釋度作 為試劑盒中的工作濃度。